1. 一种应用于植物上的CRISPR/Cas9载体的构建方法，其特征在于，包括：
S1：靶序列退火复性：根据选定的靶序列，合成互补的Oligo DNA，将合成的Oligo DNA序列进行退火复性获得DNA双链序列，并稀释；
S2：PSG载体的酶切：采用限制性内切酶BbsI酶切pSG载体，酶切产物经超薄产物纯化试剂盒进行回收；
S3：连接和转化：配置连接体系，将S1获得的稀释后的DNA双链序列与S2获得的酶切产物进行连接反应，将获得的全部连接产物采用热激发转化至大肠杆菌JM109中；
S4：重组质粒的鉴定和提取：分别挑单菌落于LB/Amp液体培养基中震荡培养，分别以M13 fwd和Oligo-R为引物进行菌液PCR鉴定，将验证正确的菌液转接到新鲜的LB/Amp液体培养基中，培养后进行质粒的提取，得到重组质粒；
S5：重组资料和PCC质粒的双酶切：将得到的重组质粒和PCC质粒进行双酶切，酶切产物经1%的琼脂糖凝胶电泳后，采用凝胶回收试剂盒分别回收目标片段；
S6：连接、转化和鉴定：配置连接体系，将S5获得的酶切回收目标片段进行连接反应，将获得的全部连接产物采用热激发转化至大肠杆菌JM109中，挑单菌落于LB/Kan液体培养基中震荡培养，并进行菌液PCR鉴定，将阳性菌液转接到新鲜的LB/Kan液体培养基中培养，提取质粒，即获得构建好的CRISPR/Cas9载体；
所述PSG载体的构建包括：
以pX330质粒为模板，使用高保真酶PrimeSTAR HS DNA Polymerase扩增sgRNA片段，回收该片段，标记为sgRNA1，引物序列为SEQ ID NO.1所示的Sg1-F和SEQ ID NO.2所示的Sg1-R；
使用EcoRI-HF和XbaI分别双酶切pUC19和sgRNA1，回收目的片段后按1：7的摩尔比进行连接，得到重组质粒pSG1，测序，保留序列完全正确的阳性质粒;
以pSG1质粒为模板，使用高保真酶PrimeSTAR HS DNA Polymerase扩增sgRNA片段，回收该片段，标记为sgRNA，引物序列为SEQ ID NO.3所示的Sg2-F和SEQ ID NO.4所示的Sg2-R；
使用EcoRI-HF和XbaI双酶切pUC19，使用BsaI酶切sgRNA，回收目的片段后按1：7的摩尔比进行连接，得到重组质粒pSG，测序，保留序列完全正确的阳性质粒。
2. 根据权利要求1所述的应用于植物上的CRISPR/Cas9载体的构建方法，其特征在于，所述PCC载体的构建包括：
以pX330质粒为模板，使用高保真酶PrimeSTAR HS DNA Polymerase扩增hSpCas9片段，其中引物Cas-F：Cas-R1：Cas-R2=1.5：0.2：1.3，回收该片段，标记为hSpCas9，Cas-F的序列如SEQ ID NO.5所示，Cas-R1的序列如SEQ ID NO.6所示，Cas-R2的序列如SEQ ID NO.7所示；
使用NcoI-HF和BstEII-HF分别双酶切pCAMBIA1302和hSpCas9，回收目的片段后按1：5的摩尔比进行连接，得到重组质粒pCC1，测序，保留序列完全正确的阳性质粒;
以pCAMBIA1302质粒为模板，使用高保真酶PrimeSTAR HS DNA Polymerase扩增CaMV 35 enhanced promoter片段，回收该片段，标记为CaMV-ep，引物序列为SEQ ID NO.8所示的CaMV-ep-F和SEQ ID NO.9所示的CaMV-ep-R；
使用HindIII和NcoI分别双酶切pCC1和CaMV-ep，回收目的片段后按1：5的摩尔比进行连接，得到重组质粒pCC，测序，保留序列完全正确的阳性质粒。
3. 根据权利要求2所述的应用于植物上的CRISPR/Cas9载体的构建方法，其特征在于，在步骤S1中，合成一对互补的Oligo DNA，即序列为SEQ ID NO.10所示的Oligo-F 和序列为SEQ ID NO.11所示的Oligo-R。
4. 根据权利要求2所述的应用于植物上的CRISPR/Cas9载体的构建方法，其特征在于，在步骤S1中，合成两对互补的Oligo DNA，分别为序列为SEQ ID NO.12所示的Oligo1-F，序列为SEQ ID NO.13所示的Oligo1-R，序列为SEQ ID NO.14所示的Oligo2-F及序列为SEQ ID NO.15所示的Oligo2-R。
5. 根据权利要求3或4所述的应用于植物上的CRISPR/Cas9载体的构建方法，其特征在于，在步骤S1中，将所述合成的Oligo DNA序列进行退火复性的反应程序为：95℃变性5min，每30s 降温1℃，降温至25℃，并于4℃保存；
在所述步骤S2中，PSG载体的酶切的反应体系为100µL，37℃反应过夜，65℃反应20min。
6. 根据权利要求3所述的应用于植物上的CRISPR/Cas9载体的构建方法，其特征在于，在所述步骤S4中，所得到的重组质粒为pSG-CZ；在所述步骤S5中，将得到的pSG-CZ重组质粒、pCC质粒分别采用EcoRI-HF和XbaI进行双酶切，37℃酶切3h后，65℃反应20min得到所述酶切产物。
7. 根据权利要求4所述的应用于植物上的CRISPR/Cas9载体的构建方法，其特征在于，在所述步骤S4中，所得到的重组质粒为pSG-CZ1和pSG-CZ2；所述步骤S5中，将得到的pSG-CZ1重组质粒采用EcoRI-HF和KpnI进行双酶切，pSG-CZ2重组质粒采用XbaI和KpnI进行双酶切；或将得到的pSG-CZ1重组质粒采用EcoRI-HF和BamHI进行双酶切，pSG-CZ2重组质粒采用XbaI和BamHI进行双酶切；并将pCC质粒采用EcoRI-HF和XbaI进行双酶切，37℃酶切3h后，65℃反应20min，得到所述酶切产物。
8. 根据权利要求3或6所述的应用于植物上的CRISPR/Cas9载体的构建方法，其特征在于，在所述步骤S6中，所述菌液PCR鉴定以M13 rev和Oligo-R为引物。
9. 根据权利要求4或7所述的应用于植物上的CRISPR/Cas9载体的构建方法，其特征在于，在所述步骤S6中，所述菌液PCR鉴定以Oligo1-F和Oligo2-R为引物。